Biomedical Chemistry: Research and Methods 2025, 8(2), e00276

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

МЕТОДИКА

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

БЛАГОДАРНОСТИ

ФИНАНСИРОВАНИЕ

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

ЛИТЕРАТУРА

Рисунок 1Структурные формулы окисленной и восстановленной формы коферментов.

Рисунок 2Кинетика образования диформазана в 0.2 М карбонатном буфере, рН 10.8, содержащем 0.075 мМ НСТ в присутствии: 1 - 1.5 мМ NAD и 2 - продолжение записи; 3 – 1.5 мМ NADH; 4 – 1.5 мМ NADP. Температура 22°С.

Рисунок 3Влияние СОД на образование супероксида с участием 1 мМ NADH: 1 - фермент, 0.92 мкг белка/мл, присутствует в 0.2 М карбонатном буфере, pH 11.35, содержащем 0.075 мМ НСТ; 2 – контроль: буфер и NADH.

Рисунок 4Влияние различных концентраций NADPH на кинетику образования диформазана в супероксидгенерирующей реакции ксантин-ксантиноксидаза: 1 – 1.0 мМ; 2 – 0.5 мМ: 3 – контроль. Условия измерения: 50 мМ карбонатный буфер, pH 10.2, содержащий 0.4 мМ ЭДТА, 0.1 мМ ксантин, 0.025 мМ НСТ, ксантиноксидаза 11 мкг белка/мл. Температура 19°С.

Рисунок 5Сравнение антиоксидантного действия NADH и NAD на кинетику образования диформазана в реакции автоокисления адреналина: 1 – 1.0 мМ NADH; 2 – 1.0 мМ NAD; 3 - контроль. Условия реакции: 0.2 М карбонатный буфер, pH 10.6; 0.05 мМ НСТ, 0.058 мМ адреналин. Температура 20°С.

Рисунок 6Антиоксидантная активность различных концентраций NADH. Условия измерения: 0.2 М карбонатный буфер, рН 10.6; 0.05 мМ НСТ, 0.058 мМ адреналин. Температура 20°С.

Таблица 1Антиоксидантная активность исследуемых соединений в супероксидгенерирующей ферментативной реакции ксантин-ксантиноксизаза.

СУПЕРОКСИДГЕНЕРИРУЮЩАЯ И АНТИОКСИДАНТНАЯ АКТИВНОСТЬ НИКОТИНАМИДНЫХ КОФЕРМЕНТОВ IN VITRO

Т.В. Сирота*, М.В. Акуленко, Н.П. Сирота

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, 142290, Пущино, Московская область, ул. Институтская, 3; *эл.почта: sirotatv@rambler.ru

Ключевые слова: никотинамидные коферменты; NAD; NADP; NADH; NADPH; супероксид; нитросиний тетразолий

DOI: 10.18097/BMCRM00276

Сокращения: АФК - активные формы кислорода; НСТ - нитросиний тетразолий; АОА – антиоксидантная активность; СОД – супероксиддисмутаза.

ВВЕДЕНИЕ

Основная функция никотинамидных коферментов (NAD, NADH, NADP, NADPH), как известно, участие в окислительно-восстановительных реакциях энергообеспечения клетки. Свойства вещества определяются его химическим строением; NAD – основной компонент в каждом из этих соединений (рис.1).

Рисунок 1. Структурные формулы окисленной и восстановленной формы коферментов.

Так функционируют коферменты как кофакторы оксидоредуктаз. Окислительно-восстановительный гомеостаз в клетке поддерживается парами NAD/HADH и NADP/NADPH; непосредственно при их участии происходит процесс появления активных форм кислорода (АФК) и функционирование системы антиоксидантной защиты [1-5]. Нарушение баланса в этих реакциях приводит к энергетическому стрессу, окислительному стрессу и, в конечном итоге, к патологическим состояниям [145]. Участие никотинамидных коферментов установлено и в других клеточных процессах, таких как клеточная сигнализация, возрастные изменения и гибель клеток, а также в функционировании иммунных защитных систем организма [3-6]. Функции никотинамидных коферментов связаны, таким образом, с фундаментальными процессами в  клетке и организме в целом.

Ранее мы обнаружили новое свойство никотинамидных коферментов: как окисленные, так и восстановленные формы коферментов способны генерировать супероксид в щелочной среде, т.е. они обладают супероксидгенерирующей активностью [78]. Было известно, что NAD и NADP могут образовывать аддукты с различными ионами, в том числе и с гидроксильным анионом ОН [910], однако значение этого феномена с позиции АФК и понятия «супероксид», не обсуждалось. Нами предложен механизм этого феномена, который связан с молекулой никотинамида в составе кофермента, но он иной [8], отличный от окислительно-восстановительных реакций.

В настоящей работе представлены и другие свойства коферментов: в системе in vitro они проявляют также антиоксидантную активность (АОА).

Цель настоящей работы – продемонстрировать супероксидгенерирующую активность коферментов, учитывая ранее проведенные эксперименты [78] и исследовать АОА этих соединений

МЕТОДИКА

Реактивы

В работе использовали следующие реактивы: никотинамид («AppliChem», Германия); NAD («Sigma», США; «Dia-M», Россия); NADPH, NADP, NADH («Reanal», Венгрия; «Sigma-Aldrich», США; «Fluka», Германия); СОД (superoxide dismutase, КФ 1.15.1.1, 3.35 units/мг белка, «Sigm»a); XO (хanthine oxidase, КФ 1.17.3.2), 0.3 units/mg protein («Sigma-Aldrich»); Na2CO3, нитросиний тетразолий («Sigma»; «Dia-M»), NaHCO3 («J. T. Baker», Голландия); фармакопейную форму 0.1% адреналина гидрохлорида Московского эндокринного завода.

Во всех экспериментах восстановленные формы пиридиннуклеотидов, NADH и NADPH, спектрально проверяли на наличие пика при длине волны 340 нм.

Кинетические исследования проводили на спектрофотометре UVIKON 923 Double Beam UV/VIS Spectrophotometer («Kontron instruments», Италия) в 1-см кювете в режиме «time Driver» при длине волны 560 нм в соответствующих буферных растворах при комнатной температуре или иной, указанной в подписях к рисунку. В работе также использовали спектрофотометр Specord UV/VIS («Carl Zeiss Jena», Германия).

Супероксигенерирущую активность выявляли с использованием известного классического реагента НСТ (нитросиний тетразолий), применяемого для идентификации О2─●. НСТ под действием образующегося супероксида восстанавливается до диформазана, который регистрируется при длине волны 560 нм [11]. В спектрофотометрическую кювету с буфером вносили исследуемые вещества, 0.075 мМ НСТ присутствовал во всех пробах. В экспериментах c NAD после записи кинетики реакции в течение 10 мин и последующих еще 10 мин содержимое кюветы переносили в пробирку с плотно закрывающейся пробкой, чтобы изолировать от кислорода воздуха, и оставляли на продолжительное время. Наблюдали появление или отсутствие окрашенных продуктов в опытной и соответствующих контрольных пробах.

Также для идентификации О2─● были проведены эксперименты с супероксиддисмутазой (СОД).

Антиоксидантную активность определяли с применением супероксидгенерирующей ферментативной системы ксантин-ксантиноксидаза [12] и супероксидгенерирующей модельной химической реакции автоокисления адреналина [1314]. Регистрировали образование диформазана. Способность исследуемых соединений ингибировать ксантин-ксантиноксидазную реакцию или процесс автоокисления адреналина оценивали как проявление АОА. Ксантин-ксантиоксизазную реакцию проводили, как описано [12]: в 50 мМ Na2CO3 буфере, рН 10.2, с 0.4 мМ ЭДТА, в присутствии 0. 025 мМ НСТ и коммерческого препарата ксантиноксидазы, 11 мкг белка /мл. Реакцию начинали внесением 0.1 мМ ксантина. Реакцию автоокисления адреналина в щелочной среде проводили по протоколу, описанному ранее [13, 14.] Спектральные исследования проводили в 0.2 М карбонатном буфере (рН 10.6) в присутствии 0.05 мМ НСТ, реакцию начинали внесением 0.058 мМ адреналина. Время регистрации во всех измерениях составило 3-4 мин. Накопление диформазана оценивали по изменению оптической плотности в единицу времени и рассчитывали по формуле: ∆Е/∆t = (Et-E1)/ ∆t, где E1 – регистрируемая оптическая плотность при 560 нм сразу же после внесения адреналина; Et – оптическая плотность через время ∆t, в течение которого регистрируется автоокисление адреналина. АОА выражали в условных единицах: 1% ингибирования = 1 усл.ед.

Статистическую обработку результатов проводили с использованием t критерия Стьюдента (программы Microsoft Excel): определяли среднее значение (M), стандартное отклонение (SD). Представленные графики являются конкретными экспериментальными кривыми из типичных многократно полученных при 4-6 параллельных измерениях в каждом опыте.

МЕТОДИКА

Феномен наличия супероксидгенерирующей активности никотинамидных коферментов описан нами ранее [78]. В настоящем исследовании представлены эксперименты, демонстрирующие это свойство (рис. 2)

Рисунок 2. Кинетика образования диформазана в 0.2 М карбонатном буфере, рН 10.8, содержащем 0.075 мМ НСТ в присутствии: 1 - 1.5 мМ NAD и 2 - продолжение записи; 3 – 1.5 мМ NADH; 4 – 1.5 мМ NADP. Температура 22°С.

Показана кинетика образования диформазана при участии NADH (кривая 3) и NADP (кривая 4). В присутствии NAD диформазан не регистрируется в течение 20 мин (кривая 1 и 2) и требуется значительно большее время для его выявления. Как описано в разделе «Методика», после записи кинетики этой пробы, содержимое кюветы переносили в пробирку и через некоторое время видели появление окрашенного продукта. Такой же результат наблюдали и ранее [7].

На рисунке 3 показано: СОД ингибирует процесс генерации супероксида, что указывают на образование именно О2─● (кривая 1). Наблюдается появление лаг периода в продолжение 2 мин, и через 4 мин ингибирующий эффект составлял приблизительно 75 %.

Для существования супероксида и его идентификации необходима щелочная среда. При создании таких условий и была обнаружена супероксидгенерирующая активность исследуемых соединений. Щелочные условия используют в различных методиках для регистрации О2 ─● [7812-16]. В обнаруженном феномене донором электрона является именно сама молекула кофермента, которая способна образовывать аддукты с гидроксильным анионом ОН буфера. В результате такого взаимодействия происходит образование О2 ─●. Механизм процесса описан в нашем исследовании [8]. В обзорных статьях, где обсуждаются различные системы генерации супероксида [617], никотинамидные коферменты не рассматриваются.

Рисунок 3. Влияние СОД на образование супероксида с участием 1 мМ NADH: 1 - фермент, 0.92 мкг белка/мл, присутствует в 0.2 М карбонатном буфере, pH 11.35, содержащем 0.075 мМ НСТ; 2 – контроль: буфер и NADH.

Установленные прооксидантные свойства коферментов предполагают проявление ими и антиоксидантной активности, поскольку окислительно-восстановительные процессы в биологических системах сопряжены и происходят при участии определенных соединений, таковыми и являются коферменты. Используя модельные супероксидгенерирующие системы, было проведено исследование антиоксидантных свойств коферментов. Применяли две супероксидгенерирующие модели: ферментативная реакция ксантин-ксантиноксидаза [12] и химическая реакция автоокисления адреналина в щелочной среде, моделирующая процесс хиноидного окисления катехоламинов в организме [14-16]. Ингибирование генерации супероксида оценивали как АОА.

На рисунке 4 показана кинетика реакции накопления диформазана в присутствии 1.0 и 0.5 мМ NADPH (кривые 1 и 2) в реакции ксантин-ксантиноксидаза; ингибирующий эффект составлял 53% и 32% соответственно.

Рисунок 4. Влияние СОД на образование супероксида с участием 1 мМ NADH: 1 - фермент, 0.92 мкг белка/мл, присутствует в 0.2 М карбонатном буфере, pH 11.35, содержащем 0.075 мМ НСТ; 2 – контроль: буфер и NADH.

В этой же супероксидгенерирующей системе исследованы и другие соединения (табл. 1).

В таблице представлены результаты определения АОА: скорость реакции образования диформазана и рассчитанная АОА (см. раздел «Методика»). Кроме коферментов были исследованы вещества, которые как компоненты входят в состав молекулы кофермента (рис.1), никотинамид и аденозин. Установлено, что все соединения достоверно ингибируют процесс генерации супероксида. Наибольшим антиоксидантным эффектом, сравнимым с СОД, обладал NADP (1 мМ); наблюдался и выраженный концентрационный эффект. В той же концентрации восстановленная форма кофермента NADPH была менее эффективна. Несколько иным было действие NADH: увеличение концентрации NADH от 1 мМ до 2 мМ не приводило к усилению ингибирования. Антиоксидантные свойства выявлены у никотинамида и аденозина, которые, как было показано ранее [78], не обладали

супероксидгенерирующей активностью.

Закрыть окно
Таблица 1. Антиоксидантная активность исследуемых соединений в супероксидгенерирующей ферментативной реакции ксантин-ксантиноксизаза.

Некоторые коферменты были исследованы и в другой супероксидгенерирующей модельной системе – реакция автоокисления адреналина в щелочной среде, которая известна как цепная реакции и используется для выявления и исследования антиоксидантных свойств различных препаратов [13-16].

На рисунке 5 показано сравнение ингибирующего действия NADH (кривая 1) и NAD (кривая 2). Восстановленный кофермент сильнее ингибирует генерацию супероксида, 60% и 28%, соответственно.

Рисунок 5. Сравнение антиоксидантного действия NADH и NAD на кинетику образования диформазана в реакции автоокисления адреналина: 1 – 1.0 мМ NADH; 2 – 1.0 мМ NAD; 3 - контроль. Условия реакции: 0.2 М карбонатный буфер, pH 10.6; 0.05 мМ НСТ, 0.058 мМ адреналин. Температура 20°С.

На рисунке 6 демонстрируется ингибирующее действие различных концентраций NADH в этой же реакции; представлены величины рассчитанной АОА кофермента.

Установлено, что коферменты ингибируют генерацию супероксида в модельных супероксидгенерирующих системах, т.е. являются антиоксидантами, т.е. ловушками О2▬• (рис. 4-6, табл. 1). Такой же способностью обладают никотинамид и аденозин, входящие в состав молекулы кофермента (табл. 1). Супероксидгенерирующую активность проявляют только коферменты, т.е. они прооксиданты (рис. 2 и [78]), но таких свойств нет у аденозина, АDP, АTP [7] и никотинамида [8].

Рисунок 6. Сравнение антиоксидантного действия NADH и NAD на кинетику образования диформазана в реакции автоокисления адреналина: 1 – 1.0 мМ NADH; 2 – 1.0 мМ NAD; 3 - контроль. Условия реакции: 0.2 М карбонатный буфер, pH 10.6; 0.05 мМ НСТ, 0.058 мМ адреналин. Температура 20°С.

Результаты настоящей работы раскрывают новые химические свойства коферментов: способность генерировать супероксиды в щелочной среде и быть ингибиторами в супероксидгенерирующих системах. Таким образом, in vitro коферменты проявляют супероксидгенерирущую и антиоксидантную активность и их можно считать бифункциональными биомолекулами. В литературе описываются различные способы генерации супероксид-анионов: химические, ферментативные, биологические, техногенные и др. [617], но нет примеров с участием коферментов. В нашем исследовании показано, что коферменты способны генерировать супероксид путем образования аддуктов с ионами среды и через химическое изменение собственной молекулы. Можно предположить, что в клетке, в органеллах (например, митохондриях), где физиологическая температура существенно выше, чем в экспериментах in vitro, при локальных изменениях рН может появляться О2─● как неконтролируемый химический реагент. Возможно, что таким образом молекула кофермента и именно через рН способна самостоятельно участвовать в клеточной сигнализации, а при избытке супероксида в среде выполнять и роль антиоксиданта. Наличие антиоксидантной способности этих соединений также показано в настоящей работе.

В литературе активно обсуждается возможность применения коферментов и их компонентов в терапевтических целях [3618-23]; также отмечается важность способа их доставки [323]. Проведенные исследования предполагают, что NAD может использоваться как терапевтическое средство при ишемических и травматических повреждениях мозга, при неврологических расстройствах опосредованных PARP-1 [318-202223]. Применяется интраназальный способ доставки лекарства [323]. При лечении экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита животным вводили препарат внутрибрюшинно и сделан вывод об эффективном и перспективном средстве лечения иммунных заболеваний и рассеянного склероза [2023]. NAD улучшил лечение регулируя SIRT1 путем ингибирования сигнального пути PI3K/Akt/mTOR [22]. Получены перспективные результаты с применением NAD в моделях, где с целью замедления процесса старения задействованы сиртуины [22-23]. Использовали ключевой предшественник NAD никотинамидмононуклеотид (NMH) для лечения в клеточной модели болезнь Паркинсона [21].

Необходимо отметить, что, вероятно, как перспективный путь в лечении и профилактике заболеваний, следует искать пути регуляции биосинтеза коферментов в организме и/или использование их предшественников. Такой подхoд мы рекомендовали и ранее [24]. В экспериментальных исследованиях с использованием коферментов как лекарственных препаратов необходимо учитывать их свойство – способность генерировать супероксид в щелочной среде и быть антиоксидантом.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

Настоящая работа не содержит описания исследований с использованием людей и животных в качестве объектов.

БЛАГОДАРНОСТИ

Авторs выражают благодарность Н.Е. Ляминой за техническую помощь в проведении экспериментов.

ФИНАНСИРОВАНИЕ

Работа выполнена в рамках Государственного задания ИТЭБ РАН № 075-00223-25-00.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

ЛИТЕРАТУРА

  1. Koju, N., Qin, Z., Sheng, R. (2022) Reduced nicotinamide adeninedinucleotide phosphate in redox balance and diseases: a friend or foe? ActaPharmacologic Sinica, 43, 1889–1904. DOI
  2. Kirsch, M., Groot, H. (2001) NAD(P)H, a directly operating antioxidant?FASEB J., 15(9), 1569-1574. DOI
  3. Ying, W. (2006) NAD+ and NADH in cellular functions and cell death. Front.Biosci., 11, 3129– 3148. DOI
  4. Ray, P.D., Huang, B.W., Tsuji, Y. (2012) Reactiv oxygen species (ROS)homeostasis and redox regulation in cellular signaling. Cell Signal., 24(5),981–990. DOI
  5. Schieber, M., Chandel, N.S. (2014) ROS function in redox signaling andoxidative stress. Curr. Biol., 24(10), R453-462. DOI
  6. Andrés, C.M.C, Pérez de la Lastra, J.M., Andrés Juan, C., Plou, F.J., Pérez-Lebeña, E. (2023) Superoxide anion chemistry - its role at the core of the innateimmunity. Int. J. Mol. Sci., 24(3), 1841. DOI
  7. Sirota, T. (2023) Superoxide generation by nicotinamide coenzymes.Biomedical Chemistry: Research and Methods, 6(1), e00188. DOI
  8. Sirota, T.V. (2024) Superoxide generating activity of nicotinamidecoenzymes. Biophysics, 69, 18–24. DOI
  9. Guilbert, C.C., Johnson, S.L. (1971) Isolation and characterization of thefluorescent alkali product from diphosphopyridine nucleotide. Biochemistry,10(12), 2313-2316. DOI
  10. Metzler, D.E., Metzler, C.M. (2003) Biochemistry: the chemical reactions ofliving cells, 2nd Edition, Academic Press, New York, 1, 1973 p.
  11. Altman, F.P. (1976) Tetrazolium salts and formazans. Progress inHistochemistry and Cytochemistry, 9(3), 1-56. DOI
  12. Beauchamp, C., Fridovich, I. (1971) Superoxide dismutase: improvedassays and an assay applicable to acrylamide gels. Anal Biochem, 44(1), 276-87. DOI
  13. Sirota, T.V. (2012) Use of nitro blue tetrazolium in the reaction ofadrenaline autooxidation for the determination of superoxide dismutase activity.Biomeditsinskaya Khimiya, 58(1), 77-87. DOI
  14. Sirota, T.V. (2016) Standardization and regulation of the rate of thesuperoxide-generating adrenaline autoxidation reaction used for evaluation ofpro/antioxidant properties of various materials. Biomeditsinskaya Khimiya,62(6), 650-655. DOI
  15. Sirota, T.V., Sirota, N.P. (2022) On the Mechanism of Oxygen Activation inChemical and Biological Systems. Biophysics, 67(1), 1–7. DOI
  16. Sirota, T.V. (2020) A chain reaction of adrenaline autoxidation is a model ofquinoid oxidation of catecholamines. Biophysics, 65, 548–556. DOI
  17. Hayyan, M., Hashim, M.A., AlNashef, I.M. (2016) Superoxide ion:generation and chemical implications. Chem Rev., 116(5), 3029-85. DOI
  18. Ma, Y., Nie, H., Chen, H., Li, J., Hong, Y., Wang, B., Wang, C., Zhang, J.,Cao, W., Zhang, M., Xu, Y., Ding, X., Yin, S.K., Qu, X., Ying, W. (2015) NAD+/NADH metabolism and NAD+-dependent enzymes in cell death and ischemicbrain injury: current advances and therapeutic implications. Curr. Med. Chem.,22(10), 1239-1247. DOI
  19. Kamal, S., Babar, S., Ali, W., Rehman, K., Hussain, A., Akash, M.S.H. (2024)Sirtuin insights: bridging the gap between cellular processes and therapeuticapplications. Naunyn-Schmiedeberg’s Arch. Pharmacol., 397, 9315–9344. DOI
  20. Wang, J., Zhao, C., Kong, P., Sun, H., Sun, Z., Bian, G., Sun, Y., Guo,L. (2016) Treatment with NAD(+) inhibited experimental autoimmuneencephalomyelitis by activating AMPK/SIRT1 signaling pathway andmodulating Th1/Th17 immune responses in mice. Int. Immunopharmacol., 39,287-294. DOI
  21. Lu, L., Tang, L., Wei, W., Hong, Y., Chen, H., Ying, W., Chen, S. (2014)Nicotinamide mononucleotide improves energy activity and survival rate in anin vitro model of Parkinson’s disease. Exp. Ther. Med., 8(3), 943-950. DOI
  22. Wang, J., Song, X., Tan, G., Sun, P., Guo, L., Zhang, N., Wang, J., Li, B.(2021) NAD+ improved experimental autoimmune encephalomyelitis byregulating SIRT1 to inhibit PI3K/Akt/mTOR signaling pathway. Aging (AlbanyNY), 13(24), 25931-25943. DOI
  23. Pollak, N., Dölle, C., Ziegler, M. (2007) The power to reduce: pyridinenucleotides--small molecules with a multitude of functions. Biochem. J., 402(2),205-18. DOI
  24. Sirota, T.V. (2020) Effect of sulfur-containing compounds on the quinoidprocess of adrenaline autoxidation; Potential Neuroprotectors. BiomeditsinskayaKhimiya, 65(4), 316-323. DOI