Biomedical Chemistry: Research and Methods 2019, 2(1), e00061

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

ЛИТЕРАТУРА

Рисунок 1 Динамика показателей антиоксидантной защиты слюны в зависимости от размера опухоли. A - мочевая кислота, мкмоль/л; B - альбумин, мкмоль/л; С - каталаза, мкат/л; D - SOD, у.е; E - AOA, мкмоль/л ; F - пероксидаза, у.е.

Рисунок 2 Динамика концентрации мочевой кислоты в зависимости от наличия/отсутствия отдаленного и регионарного метастазирования.

Рисунок 3 Динамика концентрации альбумина в зависимости от наличия/отсутствия отдаленного и регионарного метастазирования.

Рисунок 4 Динамика активности каталазы в зависимости от наличия/отсутствия отдаленного и регионарного метастазирования.

Таблица 1Показатели антиоксидантной защиты в слюне.

Таблица 2Система антиоксидантной защиты слюны при раке легкого различных гистологических типов.

Таблица 3Показатели антиоксидантной защиты на фоне наличия/отсутствия отдаленного метастазирования.

Система антиоксидантной защиты слюны при немелкоклеточном раке легкого

Л.В. Бельская1*, В.К.Косенок2, Ж.Массард3

1Омский государственный педагогический университет, 644043, Омск, ул. Тухачевского 14;
*e-mail: Ludab2005@mail.ru
2Омский государственный медицинский университет, 644099, Омск, ул. Ленина 12
3Strasbourg University Hospital, Strasbourg, 67091 France

Ключевые слова: слюна; немелкоклеточный рак легкого; антиоксидантная защита

DOI: 10.18097/BMCRM00061

ВВЕДЕНИЕ

Регулирование окислительно-восстановительного гомеостаза имеет решающее значение для поддержания нормального клеточного роста и обмена веществ. Окислительный стресс определяется как дисбаланс между образованием активных форм кислорода (ROS) и способностью клетки вызывать эффективный антиоксидантный ответ. При более низких концентрациях ROS являются важными сигнальными молекулами, участвующими в клеточной пролиферации, миграции и апоптозе [1]. Идентифицировано несколько источников ROS в клетках и тканях, включая митохондриальную цепь переноса электронов и NADPH-оксидазы (NOX) [2]. При более высоких концентрациях большинство ROS вредны для клеток из-за накопления необратимых повреждений белков, липидов и, самое главное, ДНК, приводящих к мутациям и клеточной гибели [3].

ROS могут генерироваться либо экзогенными источниками, такими как ультрафиолетовое излучение, токсичные химические вещества и лекарства, физиологические изменения, либо внутриклеточными (эндогенными) источниками, такими как ферменты NOX на плазматической мембране, миелопероксидазы в фагоцитах либо как побочные продукты функции дыхательной цепи в митохондриях [4-7].

Система ингибирования избыточной генерации ROS состоит из неферментативного и ферментативного звеньев [8]. К специфическим антиоксидантным ферментам можно отнести супероксиддисмутазу (SOD), каталазу, глутатионпероксидазу, глутатионредуктазу и трансферазы [9,10]. Эта группа ферментов, локализующихся преимущественно внутриклеточно, обладает способностью разрушать свободные радикалы, а также участвовать в разложении гидроперекисей нерадикальным путем. Среди неферментных антиоксидантов можно выделить мочевую кислоту, аскорбат и альбумины, способные перехватывать избыточно продуцируемые свободные радикалы [11,12].

Продукты антиоксидантной защиты традиционно определяют в плазме крови, однако существует возможность использования слюны в качестве исследуемого биологического материала [13-15]. Следует отметить, что исследование слюны имеет преимущества по сравнению с использованием венозной или капиллярной крови, обусловленые неинвазивностью сбора и отсутствием риска инфицирования при получении биоматериала [16]. При этом слюна адекватно отражает биохимической статус и физиологическое состояние человека, что позволяет использовать ее в клинической лабораторной диагностике [17,18].

Цель исследования – изучение системы антиоксидантной защиты в слюне пациентов с немелкоклеточным раком легкого.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

В исследование включены 468 пациентов Клинического онкологического диспансера г. Омска и 215 практически здоровых людей, выбранных в качестве контрольной группы. Основная группа включала 290 больных раком легкого с различными гистологическими типами: плоскоклеточный рак – 116 (70 мужчин, возраст 59.5 [55.0–67.0] лет; 36 женщин, возраст 56.5 [54.0–63.0] лет), аденокарцинома – 174 человека (120 мужчин, возраст 61.0 [55.5–65.0] лет; 54 женщины, возраст 60.0 [57.0–65.0] лет). Группа сравнения включала 178 больных с незлокачественной легочной патологией, в том числе гамартомы – 77, туберкулемы – 41, саркоидоз – 29, фибромы – 31 человек (99 мужчин, возраст 55.0 [46.0–60.0] лет; 79 женщин, возраст 55.0 [44.0–61.0] лет). Контрольная группа включала условно здоровых пациентов, у которых при проведении плановой диспансеризации не было выявлено патологии легких (130 мужчин, возраст 53.5 [49.0–60.0] лет; 85 женщин, возраст 51.5 [46.0–59.0] лет). Включение в группы происходило параллельно. В качестве критериев включения рассматривались: возраст пациентов 30 – 75 лет, отсутствие какого-либо лечения на момент проведения исследования, в том числе хирургического, химиотерапевтического или лучевого, отсутствие признаков активной инфекции (включая гнойные процессы), проведение санации полости рта. Критерии исключения: отсутствие гистологической верификации диагноза.

У всех участников до начала лечения проводили забор слюны в количестве 2 мл. Образцы слюны собирали утром натощак путем сплевывания в стерильные пробирки, центрифугировали при 7000 об/мин (центрифуга ЦЛн-16, ротор 4). Содержание альбумина определяли спектрофотометрически по реакции с бромкрезоловым зеленым, мочевой кислоты – уриказным методом с использованием наборов «Вектор-Бест» (Россия) [19]. Активность SOD определяли по накоплению продукта автоокисления адреналина супероксидным анион-радикалом в щелочной среде [20], активность каталазы – по методике Королюка [21]. Антиоксидантную активность (AOA) выявляли по регистрации скорости окисления восстановленной формы 2,6-дихлорфенолиндофенола (2,6-DCPIP) кислородом, растворенным в реакционной среде, активность пероксидазы определяли по интенсивности окисления перекиси водорода в присутствии бензидина [22,23]. Дополнительно были рассчитаны коэффициенты SOD/catalase и SOD/peroxidase, характеризующие работу физиологического каскада антиоксидантных ферментов [24].

Статистический анализ выполнен при помощи программ Statistica 10.0 («StatSoft», США) и пакета R (версия 3.2.3) непараметрическим методом с использованием в зависимых группах критерия Вилкоксона, в независимых группах – U-критерия Манна-Уитни. Описание выборки производили с помощью подсчета медианы (Ме) и интерквартильного размаха в виде 25-го и 75-го процентилей [LQ;UQ]. Различия считали статистически значимыми при p ˂ 0.05.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

На первом этапе проведена проверка характера распределения и гомогенности дисперсий в группах. Согласно тесту Шапиро-Уилка содержание всех определяемых параметров не соответствует нормальному распределению (p < 0.05). Проведённый тест на гомогенность дисперсий в группах (тест Бартлетта) позволил отклонить гипотезу, что дисперсии гомогенны по группам (p = 0.00017). Поэтому для обработки полученных данных были применены непараметрические методы статистики.

Исследование выявило статистически достоверное уменьшение активности каталазы, SOD и концентрации мочевой кислоты как в основной группе, так и в группе сравнения (табл. 1). В обеих группах отмечен рост концентрации альбумина и активности пероксидазы по сравнению с контролем, тогда как AOA изменялась разнонаправленно: уменьшалась в группе сравнения и увеличивалась в основной.

Закрыть окно
Таблица 1. Показатели антиоксидантной защиты в слюне.

Существенных отличий в динамике показателей антиоксидантной защиты в зависимости от гистологического типа немелкоклеточного рака легкого не выявлено (табл. 2). При этом в слюне пациентов с плоскоклеточным раком активность каталазы и SOD несколько ниже, чем при аденокарциноме. Это может быть связано с преобладанием определенной формы ROS: в случае аденокарциномы – супероксидного радикала, в случае плоскоклеточного рака – перекиси водорода [25]. Интересно отметить, что для обоих гистологических типов рака легкого наблюдается рост коэффициента SOD/catalase и уменьшение отношения SOD/peroxidase, более выраженное для плоскоклеточного рака легкого. Концентрация мочевой кислоты в слюне пацинтов с аденокарциномой в среднем ниже а концентрация альбумина и активность пероксидазы выше, чем в слюне пациентов с плоскоклеточным раком.

Закрыть окно
Таблица 2. Система антиоксидантной защиты слюны при раке легкого различных гистологических типов.

Сравнение показателей системы антиоксидантной защиты в зависимости от размера опухоли (рис. 1) показало, что несмотря на сложный характер динамики исследуемых параметров, можно все-таки выделить некоторые закономерности. Так, для аденокарциномы концентрация мочевой кислоты, активности SOD, каталазы и AOA с ростом опухоли уменьшаются. Отмечены локальные максимумы для каталазы на стадии T3N0-3M0, для SOD и AOA на стадии T4N0-3M0. Для плоскоклеточного рака легкого, наоборот, наблюдается рост данных показателей вплоть до стадии T3N0-3M0, а затем локальный минимум на стадии T4N0-3M0. Для обоих гистологических типов рака легкого динамика концентрации альбумина и активности пероксидазы однотипна. Оба показателя растут с локальным минимумом на стадии T2N0-3M0 для аденокарциномы и уменьшаются с локальным максимумом на этой же стадии для плоскоклеточного рака (рис. 1).

Рисунок 1. Динамика показателей антиоксидантной защиты слюны в зависимости от размера опухоли. A - мочевая кислота, мкмоль/л;
B - альбумин, мкмоль/л; С - каталаза, мкат/л; D - SOD, у.е;
E - AOA, мкмоль/л ; F - пероксидаза, у.е.

При наличии отдаленных метастазов в легких наблюдается дальнейшее уменьшение активности каталазы и концентрации мочевой кислоты, а также рост активности пероксидазы для обоих гистологических типов рака легкого (табл. 3). Однако активность SOD, уровень альбумина и AOA меняются разнонаправленно: первые два показателя уменьшаются для аденокарциномы и растут для плоскоклеточного рака, тогда как AOA наоборот. Дополнительный расчет коэффициентов SOD/catalase и SOD/peroxidase показал, что при наличии метастатического поражения наблюдается рост первого коэффициента и уменьшение второго (табл. 3). Следует отметить, что максимальные отклонения от соответствующих значений для контрольной группы наблюдаются в слюне пациентов с плоскоклеточным раком легкого.

Закрыть окно
Таблица 3. Показатели антиоксидантной защиты на фоне наличия/отсутствия отдаленного метастазирования.

Для активности пероксидазы слюны выявлена положительная корреляция с активностью каталазы и концентрацией альбумина (r = 0.2631 и r = 0.4813 – для аденокарциномы, r = 0.5085 и r = 0.2086 – для плоскоклеточного рака легкого). Интересно, что для плоскоклеточного рака выше коэффициент корреляции для каталазы, тогда как для аденокарциномы наоборот. Можно предположить в первом случае больший вклад ферментативных систем в антиоксидантную защиту, тогда как для аденокарциномы – неферментативных.

Рисунок 2. Динамика концентрации мочевой кислоты в зависимости от наличия/отсутствия отдаленного и регионарного метастазирования.

Анализ динамики исследуемых показателей при одновременном учете как отдаленного, так и регионарного метастазирования (рис. 2 - 4) показал, что для мочевой кислоты наиболее существенные отличия выявлены между стадиями N0M0/1 и N1M0/1; при отсутствии отдаленного и регионарного метастазирования уровень мочевой кислоты выше как для плоскоклеточного рака, так и для аденокарциномы (рис. 2).

Рисунок 3. Динамика концентрации альбумина в зависимости от наличия/отсутствия отдаленного и регионарного метастазирования.

Для альбумина слюны отмечено уменьшение его концентрации для обоих гистологических типов рака легкого при переходе от N0M0 к N3M0, тогда как переход от N0M1 и N3M1 сопровождается локальными максимумами на стадии N1M1 для аденокарциномы и на стадии N0M1 для плоскоклеточного рака (рис. 3).

При наличии как отдаленного, так и регионарного метастазирования конечный уровень мочевой кислоты для плоскоклеточного рака выше, а альбумина – ниже, чем для аденокарциномы. Активность каталазы при увеличении распространенности регионального метастазирования меняется неоднозначно, однако в целом на фоне только регионарного метастазирования она выше (рис. 4). Исключение составляет стадия N3M0/1, причем активность каталазы на этой стадии практически в 2 раза отличается между плоскоклеточным раком легкого и аденокарциномой.

Рисунок 4. Динамика активности каталазы в зависимости от наличия/отсутствия отдаленного и регионарного метастазирования.

Полученные данные свидетельствуют о том, что определение компонентов антиоксидантной защиты слюны может служить дополнительным тестом при раке лёгкого.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

Исследование проведено в соответствии с Хельсинской декларацией, принятой в июне 1964 г. (Хельсинки, Финляндия) и пересмотренной в октябре 2000 г. (Эдинбург, Шотландия), и одобрено на заседании комитета по этике БУЗ Омской области «Клинический онкологический диспансер» от 21 июля 2016 г., протокол № 15.

ЛИТЕРАТУРА

  1. Liou, G-Y. & Storz, P. (2010) Reactive oxygen species in cancer. Free Radic. Res., 44(5), 479-496. DOI
  2. Bedard, K. & Krause, K.H. (2007) The NOX family of ROS-generating NADPH oxidases: physiology and pathophysiology. Physiol. Rev., 87(1), 245–313. DOI
  3. Schieber, M. & Chandel, N. (2014) ROS function in redox signaling and oxidative stress. Curr. Biol., 24(10), R453–462. DOI
  4. Liu, Y., Fiskum, G. & Schubert, D. (2002) Generation of reactive oxygen species by the mitochondrial electron transport chain, J. Neurochem., 80(5), 780–787.
  5. Robinson, J.M. (2008) Reactive oxygen species in phagocytic leukocytes. Histochem. Cell Biol., 130(2), 281–297. DOI
  6. Richter, K., Konzack, A., Pihlajaniemi, T., Heljasvaara, R. & Kietzmann, T. (2015) Redox fibrosis: impact of TGFbeta1 on ROS generators, mediators and functional consequences. Redox Biology, 6, 344–352. DOI
  7. Morry, J., Ngamcherdtrakul, W. & Yantasee, W. (2017) Oxidative stress in cancer and fibrosis: Opportunity for therapeutic intervention with antioxidant compounds, enzymes, and nanoparticles. Redox Biology, 11, 240–253. DOI
  8. Nikolayev, I.V., Kolobkova, L.N., Landesman, E.O., Stepanova, E.V. & Koroleva, O.V. (2008) The antioxidant and peroxidase activities of saliva in patients with inflammatory periodontal diseases and possibility of their correction. Biochem. Moscow Suppl. Ser. B, 2, 426. DOI
  9. Khan, A., Tania, M., Zhang, D. & Chen, H. (2010) Antioxidant Enzymes and Cancer. Chin J Cancer Res., 22(2), 87–92. DOI
  10. Abiaka, C., Al-Awadi, F., Al-Sayer, H., Gulshan, S., Behbehani, A. & Farghally, M. (2002) Activities of Erythrocyte Antioxidant Enzymes in Cancer Patients. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 16, 167–171. DOI
  11. Chanchayeva, E.A., Ayzman, R.I. & Gerasev, A.D. (2013) Modern idea of the antioxidant system of the human body. Ekologiya Cheloveka, 7, 50–58.
  12. Sozarukova, M.M., Proskurina, E.V. & Vladimirov, Yu.A. (2016) Serum albumin as a source and 'target of free radicals in pathology. Vestnik RGMU, 1, 61–67.
  13. Östürk, L.K., Akyüz, S., Yarat, A., Koç, S., Gül, N. & Doğan, B.N. (2010) Salivary lipid peroxidation and total sialic acid levels during healthy gestation and postpartum: a longitudinal study. Clinical Biochemistry, 43, 430–434. DOI
  14. Wong, D.T. Salivary Diagnostics. Wiley-Blackwell; 2008; 320 p.
  15. Giebutowicz, J., Wroczynski, P. & Samolczyk-Wanyura, D. (2011) Comparison of antioxidant enzymes activity and the concentration of uric acid in the saliva of patients with oral cavity cancer, odontogenic cysts and healthy subjects. J Oral Pathol Med., 40, 726–730. DOI
  16. Miller, C.S., Foley, J.D., Bailey, A.L., Campell, C.L., Humphries, R.L., Christodoulides, N., Floriano, P.N., Simmons, G., Bhagwandin, B., Jacobson, J.W., Redding, S.W., Ebersole, J.L. & McDevitt, J.T. (2010) Current developments in salivary diagnostics. Biomark Med.,4(1), 171–189.
  17. SSoares Nunes, L.A., Mussavira, S., Bindhu, O.S. (2015) Clinical and diagnostic utility of saliva as a non-invasive diagnostic fluid: a systematic review. Biochemia Medica, 25(2), 177–192. DOI
  18. Arunkumar, S., Arunkumar, J.S., Krishna, N.B. & Shakunthala, G.K. (2014) Developments in diagnostic applications of saliva in oral and systemic diseases - A comprehensive review. Journal of Scientific and Innovative Research, 3(3), 372-387.
  19. Clinical biochemistry. Collection of instructions. Novosibirsk: ZAO «Vektor-Best». 2011. 132 s.
  20. Sirota, T.V. (2015) Involvement of carbonate / bicarbonate ions in the superoxide of the generating reaction of autooxidation of adrenaline. Biomeditsinskaya khimiya, 61(1), 115–124. DOI
  21. Korolyuk, M.A., Ivanova, L.I., Mayorova, I.G. & Tokarev, V.E. (1988) Method for the determination of catalase activity. Laboratornoye Delo, 1, 16–19.
  22. Kondrakhin, I.P. Methods of veterinary clinical laboratory diagnostics: a reference book. M.: Kolos, 2004. 520 s.
  23. Bel'skaya, L.V., Sarf, E.A., Kosenok, V.K. & Massard, Zh. (2017) The antioxidant activity of mixed human saliva is normal. Ekologiya cheloveka, 6, 36–40.
  24. Sidorenko, Yu.S., Balyazin-Parfenov, I.V., Frantsiyants, E.M., Komarova, E.F., Pogorelova, Yu.A. & Cheryarina, N.D. (2011) Evaluation of the dynamics of free radical processes in brain tumors and metastases of cancer of various localizations in the brain. Sovremennyye tekhnologii v meditsine, 2, 42–46.
  25. Dubinina, E.E. (2001) The Role of Active Oxygen Forms as Signal Molecules in the Metabolism of Tissues in Oxidative Stress. Voprosy Meditsinskoy Khimii, 47(6), 561–581.