Разнонаправленное изменение концентрации 8-OHdG в слюне при экспрессии HER2 при раке молочной железы

##plugins.themes.bootstrap3.article.sidebar##

pdf html html (English)
Опубликован: Oct 1, 2024
DOI: https://doi.org/10.18097/BMCRM00236
Ключевые слова:
слюна; 8-гидроксидезоксигуанозин (8-OHdG); рак молочной железы; HER2

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Е.И. Дьяченко
Омский государственный педагогический университет, 644099, Омск, наб. им. Тухачевского, 14; Городской Клинический Перинатальный Центр, 644007, Омск
Е.В. Пахалкова
Городской Клинический Перинатальный Центр, 644007, Омск
Е.А. Сарф
Омский государственный педагогический университет, 644099, Омск, наб. им. Тухачевского, 14
Л.В. Бельская
Омский государственный педагогический университет, 644099, Омск, наб. им. Тухачевского, 14

Аннотация

Оценено изменение концентрации 8-OHdG в слюне среди пациентов с раком молочной железы (РМЖ) в зависимости от молекулярно-биологических подтипов. Уменьшение концентрации 8-OHdG в слюне в группе пациентов с HER2-положительной экспрессией тесно коррелирует со снижением дифференцировки клеток и высоким уровнем Ki-67, что отражает агрессивный характер опухолевого заболевания и плохие прогнозы по выживаемости. Высокая концентрация 8-OHdG в слюне может выступать в роли биологического маркера HER2-положительной группы с плохим прогнозом РМЖ, который может быть использован в качестве дополнительного метода диагностики, мониторинга состояния пациентов и ответа на терапию.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Как цитировать
Дьяченко E., Пахалкова E., Сарф E., & Бельская L. (2024). Разнонаправленное изменение концентрации 8-OHdG в слюне при экспрессии HER2 при раке молочной железы. Biomedical Chemistry: Research and Methods, 7(3), e00236. https://doi.org/10.18097/BMCRM00236
Выпуск
Том 7 № 3 (2024)
Раздел
КЛИНИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Библиографические ссылки

  1. Hirano, T. (2008) Repair system of 7,8-dihydro-8-oxoguanine as a defense line against carcinogenesis. J. Radiat. Res., 49(4), 329–440. DOI
  2. Sova, H., Jukkola-Vuorinen, A., Puistola, U., Kauppila, S., Karihtala, P. (2010) 8-Hydroxydeoxyguanosine: Anew potential independent prognostic factor in breast cancer. Br. J. Cancer, 102(6), 1018–1023. DOI
  3. Vulimiri, S.V., Wu, X., Baer-Dubowska, W., de Andrade, M., Detry, M., Spitz, M.R., DiGiovanni, J. (2000) Analysis of aromatic DNA adducts and 7,8-dihydro-8-oxo-2′-deoxyguanosine in lymphocyte DNA from a case-control study of lung cancer involving minority populations. Mol. Carcinog., 27(1), 34–46. DOI
  4. Nishigori, C., Arima, Y., Matsumura, Y., Matsui, M., Miyachi, Y. (2005) Impaired removal of 8-hydroxydeoxyguanosine induced by UVB radiation in naevoid basal cell carcinoma syndrome cells. Br. J. Dermatol., 153(Suppl 2), 52–56. DOI
  5. Kaczmarek, P., Bіaszczyk, J., Fijaіkowski, P., Sierakowska-Fijaіek, A., Niemirowicz, J., Kasprzak, A., Baj, Z. (2005) Analiza stezenia 8-hydroksy-2′-deoxyguanozyny w moczu chorych na powierzchownego raka pecherza moczowego leczonych zawiesina pratka BCG [Assessment of 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine concentrations in bladder cancer patients treated with intravesical BCG instillation]. Polski Merkuriusz Lekarski, 19(112), 526–528.
  6. Romano, G., Sgambato, A., Mancini, R., Capelli, G., Giovagnoli, M.R., Flamini, G., Boninsegna, A., Vecchione, A., Cittadini, A. (2000) 8-Hydroxy-2′-deoxyguanosine in cervical cells: Correlation with grade of dysplasia and human papillomavirus infection. Carcinogenesis, 21, 1143–1147.
  7. Miyake, H., Hara, I., Kamidono, S., Eto, H. (2004) Oxidative DNA damage in patients with prostate cancer and its response to treatment. J. Urol., 171(4), 1533–1536. DOI
  8. Farinati, F., Cardin, R., Bortolami, M., Nitti, D., Basso, D., de Bernard, M., Cassaro, M., Sergio, A., Rugge, M. (2008) Oxidative DNA damage in gastric cancer: CagA status and OGG1 gene polymorphism. Int. J. Cancer., 123(1), 51–55. DOI
  9. Schafer, Z.T., Grassian, A.R., Song, L., Jiang, Z., Gerhart-Hines, Z., Irie, H.Y., Gao, S., Puigserver, P., Brugge, J.S. (2009) Antioxidant and oncogene rescue of metabolic defects caused by loss of matrix attachment. Nature, 461(7260), 109–113. DOI
  10. Chen, W., Sun, Z., Wang, X.-J., Jiang, T., Huang, Z., Fang, D., Zhang, D.D. (2009) Direct interaction between Nrf2 and p21(Cip1/WAF1) upregulates the Nrf2-mediated antioxidant response. Mol. Cell., 34(6), 663–673. DOI
  11. Tai, D.J., Jin, W.S., Wu, C.S., Si, H.W., Cao, X.D., Guo, A.J., Chang, J.C. (2012) Changes in intracellular redox status influence multidrug resistance in gastric adenocarcinoma cells. Exp. Ther. Med., 4(2), 291–296. DOI
  12. Bel’skaya, L.V., Sarf, E.A., Solomatin,D.V. (2024) Free salivary amino acid profile in breast cancer: Clinicopathological and molecular biological Features. Curr. Issues Mol. Biol., 46(6), 5614–5631. DOI