Свойства кальций-активируемых хлорных токов в нейронах Пуркинье мозжечка крыс

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

В.Л. Замойский
Е.В. Бовина
В.В. Григорьев

Аннотация

Методом локальной фиксации потенциала (patch-clamp) в конфигурации на целой клетке (whole cell) показано наличие выходящего Ca2+-активируемого хлорного тока в мембране свежеизолированных клеток Пуркинье мозжечка крыс. Хлорные токи появлялись в безнатриевом наружном растворе и обратимо исчезали в отсутствие снаружи ионов Cl- или ионов кальция. При замене ионов K+ в микропипетке на ионы Cs+ (120 мМ) этот ток появлялся при концентрации ионов натрия (140 мМ) снаружи от мембраны. Ток на 80–100% блокировала 25–100 мкМ нифлуминовая кислота. Блокаторы калиевых каналов тетраэтиламмоний (ТЕА) и 4-аминопиридин (4-АП) также блокировали кальций-активируемые хлорные токи. Значение IC50 для ТЭА составило 130 мкМ и 110 мкМ для 4-АП. Действие ТЭА было обратимо. 4-АП в концентрации 100 мкМ и выше действовал необратимо, блокируя выходящие калиевые токи и выходящий хлорный ток.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Как цитировать
Замойский V., Бовина E., & Григорьев V. (2018). Свойства кальций-активируемых хлорных токов в нейронах Пуркинье мозжечка крыс. Biomedical Chemistry: Research and Methods, 1(3), e00034. https://doi.org/10.18097/BMCRM00034
Раздел
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Библиографические ссылки

  1. Pedemonte, N. Galietta, L. J. V. (2014). Structure and Function of Tmem16 Proteins (Anoctamins). Physiological Reviews, 94(2): p. 419-459. DOI
  2. Huang, F., Rock, J. R., Harfe, B. D., Cheng, T., Huang, X. Z., Jan, Y. N., Jan, L. Y. (2009). Studies on expression and function of the TMEM16A calcium-activated chloride channel. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 106(50): p. 21413-21418. DOI
  3. Kaneda, M., Nakamura, H., Akaike, N. (1988). Mechanical and Enzymatic Isolation of Mammalian Cns Neurons. Neuroscience Research, 5(4): p. 299-315. DOI
  4. Hamill, O. P., Marty, A., Neher, E., Sakmann, B., Sigworth, F. J. (1981). Improved Patch-Clamp Techniques for High-Resolution Current Recording from Cells and Cell-Free Membrane Patches. Pflugers Archiv-European Journal of Physiology, 391(2): p. 85-100. DOI
  5. Ferrera, L., Caputo, A., Galietta, L. J. V. (2010). TMEM16A Protein: A New Identity for Ca2+-Dependent Cl- Channels. Physiology, 25(6): p. 357-363. DOI
  6. Arroyo, J. P., Kahle, K. T., Gamba, G. (2013). The SLC12 family of electroneutral cation-coupled chloride cotransporters. Molecular Aspects of Medicine, 34(2-3): p. 288-298. DOI
  7. Kaila, K., Price, T. J., Payne, J. A., Puskarjov, M., Voipio, J. (2014). Cation-chloride cotransporters in neuronal development, plasticity and disease. Nature Reviews Neuroscience, 15(10): p. 637-654. DOI
  8. Huang, W. C., Xiao, S. H., Huang, F., Harfe, B. D., Jan, Y. N., Jan, L. Y. (2012). Calcium-Activated Chloride Channels (CaCCs) Regulate Action Potential and Synaptic Response in Hippocampal Neurons. Neuron, 74(1): p. 179-192. DOI
  9. Sanchez, D. Y. Blatz, A. L. (1994). Block of Neuronal Fast Chloride Channels by Internal Tetraethylammonium Ions. Journal of General Physiology, 104(1): p. 173-190. DOI