Свойства кальций-активируемых хлорных токов в нейронах Пуркинье мозжечка крыс
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Аннотация
Методом локальной фиксации потенциала (patch-clamp) в конфигурации на целой клетке (whole cell) показано наличие выходящего Ca2+-активируемого хлорного тока в мембране свежеизолированных клеток Пуркинье мозжечка крыс. Хлорные токи появлялись в безнатриевом наружном растворе и обратимо исчезали в отсутствие снаружи ионов Cl- или ионов кальция. При замене ионов K+ в микропипетке на ионы Cs+ (120 мМ) этот ток появлялся при концентрации ионов натрия (140 мМ) снаружи от мембраны. Ток на 80–100% блокировала 25–100 мкМ нифлуминовая кислота. Блокаторы калиевых каналов тетраэтиламмоний (ТЕА) и 4-аминопиридин (4-АП) также блокировали кальций-активируемые хлорные токи. Значение IC50 для ТЭА составило 130 мкМ и 110 мкМ для 4-АП. Действие ТЭА было обратимо. 4-АП в концентрации 100 мкМ и выше действовал необратимо, блокируя выходящие калиевые токи и выходящий хлорный ток.
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Библиографические ссылки
- Pedemonte, N. Galietta, L. J. V. (2014). Structure and Function of Tmem16 Proteins (Anoctamins). Physiological Reviews, 94(2): p. 419-459. DOI
- Huang, F., Rock, J. R., Harfe, B. D., Cheng, T., Huang, X. Z., Jan, Y. N., Jan, L. Y. (2009). Studies on expression and function of the TMEM16A calcium-activated chloride channel. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 106(50): p. 21413-21418. DOI
- Kaneda, M., Nakamura, H., Akaike, N. (1988). Mechanical and Enzymatic Isolation of Mammalian Cns Neurons. Neuroscience Research, 5(4): p. 299-315. DOI
- Hamill, O. P., Marty, A., Neher, E., Sakmann, B., Sigworth, F. J. (1981). Improved Patch-Clamp Techniques for High-Resolution Current Recording from Cells and Cell-Free Membrane Patches. Pflugers Archiv-European Journal of Physiology, 391(2): p. 85-100. DOI
- Ferrera, L., Caputo, A., Galietta, L. J. V. (2010). TMEM16A Protein: A New Identity for Ca2+-Dependent Cl- Channels. Physiology, 25(6): p. 357-363. DOI
- Arroyo, J. P., Kahle, K. T., Gamba, G. (2013). The SLC12 family of electroneutral cation-coupled chloride cotransporters. Molecular Aspects of Medicine, 34(2-3): p. 288-298. DOI
- Kaila, K., Price, T. J., Payne, J. A., Puskarjov, M., Voipio, J. (2014). Cation-chloride cotransporters in neuronal development, plasticity and disease. Nature Reviews Neuroscience, 15(10): p. 637-654. DOI
- Huang, W. C., Xiao, S. H., Huang, F., Harfe, B. D., Jan, Y. N., Jan, L. Y. (2012). Calcium-Activated Chloride Channels (CaCCs) Regulate Action Potential and Synaptic Response in Hippocampal Neurons. Neuron, 74(1): p. 179-192. DOI
- Sanchez, D. Y. Blatz, A. L. (1994). Block of Neuronal Fast Chloride Channels by Internal Tetraethylammonium Ions. Journal of General Physiology, 104(1): p. 173-190. DOI