Использование метода количественной ПЦР для диагностики бактериального вагиноза

##plugins.themes.bootstrap3.article.sidebar##

pdf html html (English)
Опубликован: Apr 29, 2019
DOI: https://doi.org/10.18097/BMCRM00084
Ключевые слова:
Фемоскрин; Megasphaera type 1; Bacterial Vaginosis–Associated Bacteria 2; Eggerthella; ПЦР в реальном времени

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

М.Е. Сенина
ООО НПФ «Литех», 107023, Москва, ул. Малая Семеновская 3А, стр. 2
Ю.А. Савочкина
ООО НПФ «Литех», 107023, Москва, ул. Малая Семеновская 3А, стр. 2
Л.В. Скворцов
ООО НПФ «Литех», 107023, Москва, ул. Малая Семеновская 3А, стр. 2
Т.И. Попова
ООО «Лаборатория Литех», 107023, Москва, ул. Малая Семеновская 3А, стр. 2
Л.В. Джеджеиа
ООО «Лаборатория Литех», 107023, Москва, ул. Малая Семеновская 3А, стр. 2

Аннотация

Получение корректного представления о составе влагалищной микрофлоры играет важную роль в предотвращении возникновения у женщин как инфекций мочевыводящей системы, так и инфекций, передающихся половым путём. Дисбаланс облигатной и факультативной микрофлоры влагалища вызывает дисбактериоз, который является фактором риска при возникновении инфекции. Известно, что причиной бактериального вагиноза (БВ) является не единичный возбудитель, а нарушение общего баланса влагалищной микрофлоры, которое проявляется снижением представленности нормальной микрофлоры (Lactobacillus spp) и интенсивным увеличение титра условно патогенных аэробных и анаэробных бактерий. Развитие методов молекулярно-генетического анализа, в частности, подходов, основанных на использовании полимеразной цепной реакции (ПЦР), позволило значительно расширить представление о разнообразии микробных биотопов, в том числе выявить ключевых и новых «игроков» в развитии БВ.Целью данной работы была оценка возможности использования метода количественной ПЦР, реализованного в формате набора реагентов «Фемоскрин» (НПФ «Литех», Россия) для комплексной диагностики влагалищного биотопа.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Как цитировать
Сенина M., Савочкина Y., Скворцов L., Попова T., & Джеджеиа L. (2019). Использование метода количественной ПЦР для диагностики бактериального вагиноза. Biomedical Chemistry: Research and Methods, 2(2), e00084. https://doi.org/10.18097/BMCRM00084
Выпуск
Том 2 № 2 (2019)
Раздел
КЛИНИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Библиографические ссылки

  1. Martin D.H., Zozaya M., Lillis R., Miller J., Ferris. The microbiota of the human genitourinary tract: trying to see the forest through the trees. MJ.Trans Am Clin Climatol Assoc. 2012; 123:242-56.
  2. Morris M., Nicoll A., Simms I., Wilson J., Catchpole M. Bacterial vaginosis:a public health review. Br J Obstet Gynaecol. 2001;108: 439–450. DOI
  3. Hillier S.L., Nugent R.P., Eschenbach D.A., Krohn M.A., Gibbs R.S., et al. Association between bacterial vaginosis and preterm delivery of a low-birth-weight infant. The Vaginal Infections and Prematurity Study Group. N Engl J Med. 1995; 333: 1737–1742. DOI
  4. Silver H.M., Sperling R.S., St Clair P.J., Gibbs R.S. Evidence relating bacterial vaginosis to intraamniotic infection. Am J Obstet Gynecol. N Engl J Med. 1989; 161: 808–812. DOI
  5. Hillier S.L., Martius J., Krohn M., Kiviat N., Holmes K.K., et al A case-control study of chorioamnionic infection and histologic chorioamnionitis in prematurity. N Engl J Med.1988; 319: 972–978. DOI
  6. Sweet R.L. Role of bacterial vaginosis in pelvic inflammatory disease. Clin Infect Dis. 1995; 20: S271–S275. DOI
  7. Hillier S.L., Kiviat N.B., Hawes S.E., Hasselquist M.B., Hanssen P.W., et al. Role of bacterial vaginosis-associated microorganisms in endometritis. Am J Obstet Gynecol.1996;175: 435–441. DOI
  8. Wiesenfeld H., Hillier S., Krohn M., Amortegui A.J., Heine R.P., et al. Lower genital tract infection and endometritis: insight into subclinical pelvic inflammatory disease. Obstet Gynecol. 2002; 100: 456–463. DOI
  9. Haggerty C.L., Hillier S.L., Bass D.C., Ness R.B. Bacterial vaginosis and anaerobic bacteria are associated with endometritis. Clin Infect Dis. 2004; 39: 990–995. DOI
  10. Schwebke J.R., Schulien M.B., Zajackowski M. Pilot study to evaluate the appropriate management of patients with coexistent bacterial vaginosis and cervicitis. Infect Dis Obstet Gynecol.1995; 3: 119–122. DOI
  11. Schwebke J.R., Weiss H.L. Interrelationships of bacterial vaginosis and cervical inflammation. Sex Transm Dis. 2002; 29: 59–64 . DOI
  12. Wiesenfeld H.C., Hillier S.L., Krohn M.A., Landers D.V., Sweet R.L. Bacterial vaginosis is a strong predictor of Neisseria gonorrhoeae and Chlamydia trachomatis infection. Clin Infect Dis. 2003; 36: 663–668. DOI
  13. Allsworth J.E., Peipert J.F. Severity of bacterial vaginosis and the risk of sexually transmitted infection. Am J Obstet Gynecol. 2011; 205: 113.e1-113.e6. DOI
  14. Cherpes T.L., Meyn L.A., Krohn M.A., Lurie J.G., Hillier S.L. Association between acquisition of herpes simplex virus type 2 in women and bacterial vaginosis. Clin Infect Dis. 2003; 37: 319–325. DOI
  15. Myer L., Kuhn L., Stein Z.A., Wright T.C.Jr., Denny L. Intravaginal practices, bacterial vaginosis, and women’s susceptibility to HIV infection: epidemiological evidence and biological mechanisms. Lancet Infect Dis. 2005; 5:786–794. DOI
  16. Eschenbach D.A. Bacterial vaginosis and anaerobes in obstetric-gynecologic infection. Clin Infect Dis. 1993; 16: S282–S287.
  17. Spiegel C.A. Bacterial vaginosis. Rev Med Microbiol. 2002;13: 43–51. DOI
  18. Wang K.D., Su J.R. Quantification of Atopobium vaginae loads may be a new method for the diagnosis of bacterial vaginosis. Clin Lab. 2014;60(9):1501-8. DOI
  19. Shipitsyna E., Roos A., Datcu R., et al. Composition of the vaginal microbiota in women of reproductive age - sensitive and specific molecular diagnosis of bacterial vaginosis is possible? PLoS One. 2013; 8: e60670. DOI
  20. Verhelst R., Verstraelen H., Claeys G., Verschraegen G., Delanghe J., et al. Cloning of 16S rRNA genes amplified from normal and disturbed vaginal microflora suggests a strong association between Atopobium vaginae, Gardnerella vaginalis and bacterial vaginosis. BMC Microbiol. 2004; 4: 16. DOI
  21. Fredricks D.N., Fiedler T.L., Marrazzo J.M. Molecular identification of bacteria associated with bacterial vaginosis. N Engl J Med. 2005; 353:1899 1911. DOI
  22. Verstraelen H., Verhelst R., Claeys G., Temmerman M., Vaneechoutte M. Culture-independent analysis of vaginal microflora: the unrecognized association of Atopobium vaginae with bacterial vaginosis. Am J Obstet Gynecol. 2004; 191: 1130–1132. DOI
  23. Zozaya-Hinchliffe M., Martin D.H., Ferris M.J. Prevalence and abundance of uncultivated Megasphaera-like bacteria in the human vaginal environment. Appl Environ Microbiol. 2008; 74: 1656–1659. DOI
  24. Zariffard M.R., Saifuddin M., Sha B.E., Spear G.T. Detection of bacterial vaginosis-related organisms by real-time PCR for Lactobacilli, Gardnerella vaginalis and Mycoplasma hominis. FEMS Immunol Med Microbiol. 2002; 34: 277–281. DOI
  25. Sha B.E., Chen H.Y., Wang Q.J., Zariffard M.R., Cohen M.H., et al. Utility of Amsel criteria, Nugent score, and quantitative PCR for Gardnerella vaginalis, Mycoplasma hominis, and Lactobacillus spp for diagnosis of bacterial vaginosis in human immunodeficiency virus-infected women. J Clin Microbiol. 2005; 43: 4607–4612. DOI
  26. Cartwright C.P., Lembke B.D., Ramachandran K., Body B.A., Nye M.B., et al. Development and validation of a semi-quantitative, multi-target, PCR assay for the diagnosis of bacterial vaginosis. J Clin Microbiol. 2012; 50: 2321–2329. DOI