Спектрометрическое определение констант ионизации оксимов — реактиваторов холинэстераз при различной температуре
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Аннотация
Целью работы являлось определение значений констант ионизации оксимов – реактиваторов холинэстераз в водных растворах при различной температуре. Спектрометрически определены длины волн излучения в диапазоне от 190 нм до 450 нм, соответствующие максимумам поглощения протонированных и депротонированных оксимных групп, значения молярных коэффициентов светопоглощения различных форм и констант ионизации оксимов – реактиваторов холинэстераз (изонитрозин, пралидоксим, дипироксим, токсогонин, метоксим, карбоксим и азоксим) в растворах (pH 5 – 12) при температуре 20°C, 25°C и 37°C. Установлено, что доля нуклеофильных форм, участвующих в оксим-индуцированной реактивации фосфорилированных холинэстераз, положительно зависит от pH и температуры среды. Предложена гипотеза о влиянии температуры на реактивирующую способность оксимов в отношении фосфорилированных холинэстераз.
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Библиографические ссылки
- Golikov, S. N. & Zaugolnikov S. D. (1970). Reactivators of cholinestherases. Leningrad, Medicina. [in Russian].
- Albert, A. & Serjeant, E. P. (1971). The determination of ionization constants: A laboratory manual. London, Chapman and Hall.
- Čakar M. M., Vasić V. M., Petkovska Lj. T., Stojić D. Lj., Avramov-Ivić M., Milovanović G. A. (1999). Spectrophotometric and electrochemical study of protolytic equilibria of some oximes-acetylcholinesterase reactivators. J. Pharm. Biomed. Anal., 20. 655–662. DOI
- Foretić B., Burger N. (2004). The dissociation constants of 1,1′-bis (pyridinium-4-aldoxime)trimethylene dibromide. Monatshefte für Chemie, 135, 261–267. DOI
- Šinko G., Čalić M., Kovarik Z. (2006). para‐ and ortho‐Pyridinium aldoximes in reaction with acetylthiocholine. FEBS Lett, 580, 3167–3172. DOI
- Worek, F., Reiter, G., Eyer, P. & Szinicz L. (2002). Reactivation kinetics of acetylcholinesterase from different species inhibited by highly toxic organophosphates. Arch. Toxicol., 76, 523–529. DOI
- R Core Team (2018). R: A Language and Environment for Statistical Computing. Available from https://www.R-project.org/.
- Wickham, H. (2009). ggplot2: Elegant graphics for data analysis. N. Y.: Springer-Verlag.
- Elzhov, T. V., Mullen, K. M., Spiess, A.-N. & Bolker B. (2016). minpack.lm: R interface to the Levenberg-Marquardt nonlinear least-squares algorithm found in MINPACK, plus support for bounds. Available from https://CRAN.R-project.org/package=minpack.lm
- Liu, J.-H., Chou, C.-Y., Liu, Y.-L., Liao, P.-Y., Lin, P.-W., Lin, H.-H. & Yang Y.-F. (2008). Acid-base interpretation can be the predictor of outcome among patients with acute organophosphate poisoning before hospitalization. Am. J. Emerg. Med., 26, 24–30. DOI
- Setlur, R. & Sharma, R. M. (2005). Severe metabolic acidosis secondary to organophosphate poisoning. Anesth. Analg., 101, 1894–1898. DOI
- Stefanović D., Antonijević B., Bokonjić D., Stojiljković M. P., Milovanović Z. A., Nedeljković M. (2006). Effect of sodium bicarbonate in rats acutely poisoned with dichlorvos. Basic Clin. Pharmacol. Toxicol., 98, 173–180. DOI
- Clement, J. G. (1993). Recovery from soman-induced hypothermia is due to an increase in acetylcholinesterase activity but not new protein synthesis. Neurotoxicology, 14, 411–416.
- Gordon, C. J. (1996). Thermoregulatory aspects of environmental exposure to anticholinesterase agents. Rev. Environ. Health, 11, 101–117.
- Kamijo, Y., Soma, K., Uchimiya, H., Asari, Y. & Ohwada T. (1999). A case of serious organophosphate poisoning treated by percutaneus cardiopulmonary support. Vet. Hum. Toxicol., 41, 326–328.
- Buckley, N. A., Eddleston, M., Li, Y., Bevan, M. & Robertson J. (2011). Oximes for acute organophosphate pesticide poisoning. Cochrane Database Syst. Rev., 16, CD005085. DOI
- Eyer, P. (2003). The role of oximes in the management of organophosphorus pesticide poisoning. Toxicol. Rev., 22, 165–190.