Способность экстракта икры окуня и лиофилизата овариальной жидкости осетра ускорять восстановление фибробластов после стресс-индуцированного преждевременного старения

##plugins.themes.bootstrap3.article.sidebar##

pdf html html (English)
Опубликован: Jun 26, 2018
DOI: https://doi.org/10.18097/BMCRM00011
Ключевые слова:
фибробласты; преждевременное старение; окислительный стресс; икра рыб; овариальная жидкость рыб

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

М.В. Михайлова
Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. Ореховича, 119121, Москва, ул. Погодинская, д. 10
Н.Ф. Беляева
Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. Ореховича, 119121, Москва, ул. Погодинская, д. 10
Н.И. Козлова
Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. Ореховича, 119121, Москва, ул. Погодинская, д. 10
К.В. Золотарёв
Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. Ореховича, 119121, Москва, ул. Погодинская, д. 10
А.Н. Михайлов
Научно-исследовательский институт биомедицинской химии имени В. Н. Ореховича, 119121, Москва, ул. Погодинская, д. 10
С.Б. Подушка
ООО «ЧНИОРХ», 192239, Санкт-Петербург, пр-кт Славы, д. 21, оф. 83

Аннотация

Овариальная жидкость и икра рыб представляют собой ценные источники биологически активных соединений. С целью изучения механизмов старения, а также обнаружения биологически-активных соединений, способных ему препятствовать, производили моделирование данного процесса in vitro, инкубируя культуры эмбриональных фибробластов человека с пероксидом водорода. Индуцированное клеточное старение оценивали путём окрашивания на β-галактозидазу (SA-β-Gal) при рН 6.0, пролиферацию клеток - оптическим методом. Лиофилизат овариальной жидкости осетра сибирского (Acipenser baerii) и экстракт икры окуня обыкновенного (Perca fluviatilis) способны усиливать восстановление клеток после индукции их преждевременного старения, вызванного окислительным стрессом. В отличие от экстракта икры окуня и экстрактов из мышечной ткани рыб, высушенная овариальная жидкость оказывала такой эффект без роста пролиферации.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Как цитировать
Михайлова M., Беляева N., Козлова N., Золотарёв K., Михайлов A., & Подушка S. (2018). Способность экстракта икры окуня и лиофилизата овариальной жидкости осетра ускорять восстановление фибробластов после стресс-индуцированного преждевременного старения. Biomedical Chemistry: Research and Methods, 1(2), e00011. https://doi.org/10.18097/BMCRM00011
Выпуск
Том 1 № 2 (2018)
Раздел
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Библиографические ссылки

  1. Campisi, J. (2013). Aging, cellular senescence, and cancer. Annual Review of Physiology, 75, 685–705. DOI
  2. Senthil, K.K., Gokila, V.M., Mau, J.L., Lin, C.C., Chu, F.H, Wei C.C, Liao, V.H, Wang, S.Y. (2016). A steroid like phytochemical Antcin M is an anti-aging reagent that eliminates hyperglycemia-accelerated premature senescence in dermal fibroblasts by direct activation of Nrf2 and SIRT-1. Oncotarget, 7(39), 62836–62861. DOI
  3. Dimri, G.P., Lee, X., Basile, G, Acosta, M., Scott, G., Roskelley, C., Medrano, E.E., Linskens, M., Rubelj, I., Pereira-Smith, O., Peacocke, M., Campisi, J. (1995). A biomarker that identifies senescent human cells in culture and in aging skin in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 92(20), 9363–9367.
  4. Van Deursen, J.M. (2014). The role of senescent cells in ageing. Nature, 509(7501), 439–446. DOI
  5. Cho, E.J., Okamoto, T., Yokozawa, T. (2008). Therapeutic efficacy of Kangen-karyu against H2O2-induced premature senescence. Journal of Pharmacy and Pharmacology, 60(11), 1537–1544. DOI
  6. Chen, Q.M., Tu, V.C., Catania, J., Burton, M., Toussaint, O., Dilley, T. (2000). Involvement of Rb family proteins, focal adhesion proteins and protein synthesis in senescent morphogenesis induced by hydrogen peroxide. Journal of Cell Science, 113, 4087–4097.
  7. Chen, J.H., Stoeber, K., Kingsbury, S., Ozanne, S.E., Williams, G.H, Hales, C.N. (2004). Loss of proliferative capacity and induction of senescence in oxidatively stressed human fibroblasts. Journal of Biological Chemistry, 279(47), 49439–49446. DOI
  8. Argyropoulou, A., Aligiannis, N., Trougakos, I.P., Skaltsounis, A.L. (2013). Natural compounds with anti-ageing activity. Natural Product Reports, 30(11), 1412–1437. DOI
  9. Marotta, F., Polimeni, A., Solimene, U., Lorenzetti, A., Minelli, E., Jain, S., Rastmanesh, R., Sedriep, S., Soresi, V. (2012). Beneficial modulation from a high-purity caviar-derived homogenate on chronological skin aging. Rejuvenation Research, 15(2), 174–177. DOI
  10. Yoshino, A., Polouliakh, N., Meguro, A., Takeuchi, M., Kawagoe, T., Mizuki, N. (2016). Chum salmon egg extracts induce upregulation of collagen type I and exert antioxidative effects on human dermal fibroblast cultures. Clinical Interventions in Aging, 11, 1159–1168. DOI
  11. Lahnsteiner, F., Weismann, T, Patzner, R.A. (1995). Composition of the ovarian fluid in 4 salmonid species: Oncorhynchus mykiss, Salmo trutta f lacustris, Saivelinus alpinus and Hucho hucho. Reproduction Nutrition Development, 35, 465–474. DOI
  12. Nynca, J., Arnold, G.J., Fröhlich, T., Ciereszko, A. (2015). Shotgun proteomics of rainbow trout ovarian fluid. Reproduction, Fertility and Development, 27(3), 504–512. DOI
  13. Sytova, M.V., Kharenko, E.N. (2007). Ovarian liquid of sturgeon fishes - perspective raw material for receiving of biologically active substances. Rybprom, (3), 41–43.
  14. Seehuus, S.C., Norberg, K., Gimsa, U., Krekling, T., Amdam, G.V. (2006). Reproductive protein protects functionally sterile honey bee workers from oxidative stress. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 103(4), 962–967. DOI
  15. Garcia, J., Munro, E.S., Monte, M.M., Fourrier, M.C., Whitelaw, J., Smail, D.A., Ellis, A.E. (2010). Atlantic salmon (Salmo salar L.) serum vitellogenin neutralises infectivity of infectious pancreatic necrosis virus (IPNV). Fish and Shellfish Immunology, 29(2), 293–297. DOI
  16. Itzhaki, R.F., Gill, D.M. (1964). A micro-biuret method for estimating proteins. Analytical Biochemistry, 9(4), 401–410. DOI
  17. Wang, Z., Wei, D., Xiao, H. (2013). Methods of cellular senescence induction using oxidative stress. Methods in Molecular Biology, 1048, 135–144. DOI
  18. Mikhailova, M.V., Belyaeva, N.F., Kozlova, N.I., Zolotarev, K.V., Mikhailov, A.N., Berman, A.E., Archakov, A.I. (2017). Protective action of fish muscle extracts against cellular senescence induced by oxidative stress. Biomeditsinskaya Khimiya, 63(4), 351–355. DOI
  19. Simboeck, E., Di Croce, L. (2013). p16INK4a in cellular senescence. Aging, 5(8), 590–601. DOI
  20. Demidenko, Z.N., Zubova, S.G., Bukreeva, E.I., Pospelov, V.A., Pospelova, T.V., Blagosklonny, M.V. (2009). Rapamycin decelerates cellular senescence. Cell Cycle, 8(12), 1888–1895. DOI
  21. Blagosklonny, M.V. (2012). Cell cycle arrest is not yet senescence, which is not just cell cycle arrest: terminology for TOR-driven aging. Aging, 4(3), 159–165. DOI
  22. Demidenko, Z.N., Blagosklonny, M.V. (2009). At concentrations that inhibit mTOR, resveratrol suppresses cellular senescence. Cell Cycle, 8(12), 1901–1904. DOI
  23. Botden, I.P., Oeseburg, H., Durik, M., Leijten, F.P., Van Vark-Van Der Zee, L.C., Musterd-Bhaggoe, U.M., Garrelds, I.M., Seynhaeve, A.L., Langendonk, J.G, Sijbrands, E.J., Danser, A.H., Roks, A.J. (2012). Red wine extract protects against oxidative-stress-induced endothelial senescence. Clinical Science, 123(8), 499–507. DOI
  24. Yang, Y., Li, S. (2015). Dandelion Extracts Protect Human Skin Fibroblasts from UVB Damage and Cellular Senescence. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2015, 619560. DOI
  25. Kim, Y.J., Cha, H.J., Nam, K.H., Yoon, Y., Lee, H., An, S. Kim,Y.J., Cha, H.J., Nam, K.H., Yoon, Y., Lee, H., An, S. (2011). Centella asiatica extracts modulate hydrogen peroxide-induced senescence in human dermal fibroblasts. Experimental Dermatology, 20(12), 998–1003. DOI